Introduction
非消化性碳水化合物(NDC)是一类在结肠中发酵的碳水化合物,来源于多种植物、动物和微生物,对宿主健康的有益影响已得到全面研究。NDC是肠道产丁酸菌用于生产丁酸的关键底物,并受NDC结构特征的影响。例如,在体外粪菌发酵中,果聚糖、抗性淀粉和β-葡聚糖的丁酸产量高于脱氧己糖和果胶。不过,关于NDC增加产丁酸菌和丁酸的特异性的研究是有限的。
特定NDC对某些细菌或菌株的高特异性已在底物特异性和酶适应研究中得到证实,例如,摄入小麦和燕麦β-葡聚糖有利于双歧杆菌的生长,II型抗性淀粉优先富集布氏瘤胃球菌和青春双歧杆菌。然而,一些研究指出,NDC诱导的肠道微生物群的改变受到个体间微生物组独特特征差异的影响。例如,人类肠道菌群对阿拉伯木聚糖-寡糖的干预表现出不同的个体模式。因此,研究不同个体肠道菌群的差异对碳水化合物调控产丁酸菌和丁酸的特异性的影响是有意义的。
江南大学生物工程学院徐静静博士、詹晓北教授等在本文以10个NDC(6种植物来源和 4种微生物来源)为研究对象,基于7名健康捐赠者和11名T2D患者的体外粪菌发酵实验,探究10个NDC调节产丁酸菌和丁酸水平的特异性;提出黄原胶寡糖(XGOS)和结冷胶寡糖(GGOS)对增加产丁酸菌和丁酸具有很强的特异性;揭示NDC结构与肠道菌群调控的关联。
Results and discussion
响应个体间肠道微生物差异的NDC消耗量
针对10个NDC,包括菊粉、果寡糖(FOS)、燕麦β-葡聚糖(OGS)、燕麦β-葡寡糖(OGOS)、黄芪多糖(APS)、黄芪寡糖(AOS)、XGOS、GGOS、热凝胶寡糖(COS) 和普鲁兰寡糖(POS),在7名健康捐赠者和11名T2D患者的体外粪菌发酵实验中,我们分析了10个NDC发酵 48 小时后的消耗量,并通过TLC确定了七种寡糖(即 FOS、AOS、OGOS、COS、POS、XGOS 和GGOS)的降解情况(图 1)。结果表明,肠道微生物对NDCs的完全降解主要取决于个体间肠道微生物的差异,NDC降解的程度受到NDC结构和个体间肠道微生物的差异的影响。
体外粪菌发酵中短链脂肪酸的产量
与空白对照相比,所有NDCs的粪菌发酵均不同程度地增加了不同个体肠道菌群的乙酸、丙酸和丁酸产量(图 2)。在T2D组中,除了APS(中位值为0.6 mmol/L)、OGS(中位值为1.6 mmol/L)和COS(中位值为2.7 mmol/L), XGOS(中位值为3.8 mmol/L)和GGOS(中位值为3.1 mmol/L)发酵产生的丁酸水平显著高于其他NDC(中位值<1.5 mmol/L)。在健康组中XGOS(中位值为5.1 mmol/L)和GGOS(中位值为5.5 mmol/L)发酵呈现与T2D组相似的结果。结果表明与其他NDC相比,XGOS和GGOS发酵呈现更高水平的丁酸。
NDCs对粪便菌群组成的影响
基于NDC的完全消耗,以及去除体外粪菌发酵中有机酸产量最大、最小和的异常值的筛选条件,选择3名健康捐赠者(2H、4H和7H)和3名T2D患者(4D、5D和9D)的微生物菌群进行16s rRNA测序分析。如图3所示,通过主成分分析(PCoA),发现XGOS和GGOS发酵的微生物群落偏好于聚集在一起,受健康组和T2D组的个体间肠道微生物差异影响较小。如图4所示,与其他8个NDC相比,健康组和T2D组的XGOS和GGOS发酵明显增加了总产丁酸菌的数量,尤其是f_Lachnospiraceae、g_Lachnoclostridium和s_butyrate producing bacterium GM2/1,说明XGOS和GGOS发酵可以极大地富集产丁酸菌。以上结果表明与其他八个NDC相比,XGOS和GGOS在增加丁酸和产丁酸菌方面表现出很强的特异性。已有研究指出瓜尔胶、甘露寡糖和半乳糖寡糖主要由β(1→4)糖苷键组成,可显著增加丁酸梭菌。β(1→4)糖苷键连接的二葡萄糖比具有其他糖苷键的二葡萄糖产生更多的丁酸。说明XGOS和GGOS增加丁酸和产丁酸菌的特性可能归因于它们共有的 β(1→4)糖苷键。
图4 科、属和种水平上丰度最高的20种细菌中的产丁酸细菌的相对丰度。A:健康组,B:II型糖尿病组。
Conclusion
第一作者简介
通信作者简介
Jingjing Xua, Ruyue Wanga, Weibao Liua, Zhongwei Yina, Jianrong Wua, Xun Yub, Wen Wangb, Hongtao Zhanga, Zhitao Lia, Minjie Gaoa, Li Zhuc, Xiaobei Zhana,*
a Key Laboratory of Carbohydrate Chemistry and Biotechnology, Ministry of Education, School of Biotechnology, Jiangnan University, Wuxi 214122, China
b Wuxi Second People's Hospital, Wuxi 214125, China
cL & F Biotech. Ltd. 7144 Collister Dr. Burnaby BC V5A3P6, Canada
*Corresponding author.
Abstract
Butyrate and butyrate-producing bacteria are important indicators of gut microbial metabolism in human health. Ten non-digestible carbohydrates (NDCs), including inulin, fructooligosaccharide (FOS), oats β-glucans (OGS), oats β-glucan oligosaccharides (OGOS), Astragalus polysaccharides (APS), Astragalus oligosaccharides (AOS), xanthan gum oligosaccharides (XGOS), gellan gum oligosaccharides (GGOS), curdlan oligosaccharides (COS), and pullulan oligosaccharides (POS) were used to investigate NDC specificity in modulating butyrate-producing bacteria and butyrate production in 48-h in vitro fermentation studies in combination with fecal inocula from 7 healthy donors and 11 patients with type 2 diabetes (T2D). We observed that the amount of these ten NDCs utilized depended on NDC structure and inter-individual gut microbial differences. XGOS and GGOS fermentations significantly increased butyrate-producing bacteria (especially f_Lachnospiraceae) and butyric acid production. Furthermore, XGOS and GGOS fermentations showed a better ability to consistently modulate gut microbiota composition and metabolic properties between individuals of healthy donors or T2D patients when compared to inulin, FOS, APS, AOS, OGS, OGOS, COS and POS fermentation. This research indicated that xanthan gum and gellan gum oligosaccharides have strong specificity to enhance butyrate-producing bacteria and butyrate production.
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